te缓冲液能放多久（te缓冲液）

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1、配制方法：量取下列溶液于500ml烧杯中1M Tris-HCl Buffer PH=8.0 5ml0.5M EDTA PH=8.0 1ml向烧杯中加入约400mldd H2O均匀混合；将溶液定容到500ml后，高温高压灭菌；室温保存.1×TE Buffer组成浓度：10mMTris-HCl1mM EDTA PH=8.0配制量：500ml扩展资料TE缓冲溶液（Tris-EDTA buffer solution）在生化研究工作中，常常要用到缓冲溶液来维持实验体系的酸碱度。

2、研究工作的溶液体系pH值的变化往往直接影响到我们工作的成效。

3、如果提取酶实验体系的pH值变化或变化过大，会使酶活性下降甚至完全失活。

4、所以我们要学会配制缓冲溶液。

5、由弱酸及其盐组合一起使具有缓冲作用。

6、生化实验室常常用的缓冲系主要有磷酸、柠檬酸、碳酸、醋酸、巴比妥酸、Tris（三羟甲基氨基甲烷）等系统，在生化实验或研究工作中要慎重地选择缓冲体系，因为有时影响实验结果的因素并不是缓冲液的pH值，而是缓冲液中的某种离子。

7、如硼酸盐、柠檬酸盐、磷酸盐和三羟甲基甲烷等缓冲剂都可能产生不需要的反应。

8、硼酸盐：硼酸盐与许多化合物形成复盐、如蔗糖。

9、柠檬酸盐：柠檬酸盐离子容易与钙结合，所以存在有钙离子的情况下不能使用。

10、磷酸盐：在有些实验，它是酶的抑止剂或甚至是一个代谢物，重金属易以磷酸盐的形式从溶液中沉淀出来。

11、而且它在pH7.5以上时缓冲能力很小。

12、三羟甲基氨基甲烷：它可以和重金属一起作用，但在有些系统中也起抑止的作用。

13、其主要缺点时温度效应。

14、这点往往被忽视，在室温pH是7.8的Tris一缓冲液，在4℃时是8.4，在37℃时是7.4，因此，4℃配制的缓冲液拿到37℃测量时，其氢离子浓度就增加了10倍。

15、而且它在pH7.5以下，缓冲能力差。

16、参考资料：TE缓冲液的百度百科　　10 mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)　　1 mmol/L EDTA(pH 8.0)　　因为含有以上两种物质，所以称为TE。

17、　　配制分三步：　　1) 1 M Tris-HCl (pH 8.0) 50 ml的配制：称取Tris碱6.06 g，加超纯水40 ml溶解，滴加浓HCl约2.1 ml调pH至8.0，定容至50 ml。

18、　　2) 0.5 M EDTA（pH 8.0）50 ml的配制：称取EDTA-Na2·2H2O 9.306 g，加超纯水35 ml，剧烈搅拌，用约1 g NaOH颗粒调pH至8.0，定容至50 ml。

19、（EDTA二钠盐需加入NaOH将pH调至接近8.0时，才会溶解。

20、）　　3) 1×TE（10 mM Tris-HCl，pH 8.0；1 mM EDTA，pH 8.0）的配制：　　作用：　　TE缓冲液是弱碱性,对DNA的碱基有保护性,(DNA在它是的稳定性较好,不易破坏其完整性或产生开环及断裂),包括提取好的DNA也要放在TE缓冲液是保存. 10mMTris-Hcl，pH有7.47.68.0三种。

21、　　EDTA调到8.0是为了更好溶解，其他只要调到相应pH就可以。

22、Tris在7－8附近缓冲能力很强，所以加8.0的EDTA下去后，不会改变pH。

23、TE缓冲液配方(10倍，PH8.0) 100mmol/L的Tris-Hcl(PH值8.0）和10mmol/L的EDTA(PH值8.0）混合分装后高压灭菌，室温保存。

24、 注解：指的是二者在缓冲液里的最终浓度。

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